Cycle évolutif du Plasmodium

PFE & RAPPORT ETUDE CHIMIQUE, ACTIVITES ANTIPLASMODIALE ET ANTIOXYDANTE DE Mussaenda erectiloba Wernham (Rubiacées) PDF

INTRODUCTION
PREMIERE PARTIE : GENERALITES
CHAPITRE I : PALUDISME
I.1. Définition
I.2. Cycle évolutif du Plasmodium
I.2.1. Chez l’Homme : multiplication asexuée
I.2.2. Chez l’Anopheles : multiplication sexuée
I.3. Manifestation du paludisme chez l’homme
I.4. Plasmodium falciparum
I.5. Antipaludiques
I.5.1. Quinine
I.5.2. Chloroquine
I.5.3. Artémisinine
CHAPITRE II : ANTIOXYDANTS 
II.1. Définition
II.2. Radicaux libres
II.3. Stress oxydatif
II.4. Rôle et sources des antioxydants
II.5. α-Tocophérol
CHAPITRE III : PLANTE Mussaenda erectiloba Wernham
III.1. Classification botanique
III.2. Famille Rubiacées
III.3. Genre Mussaenda
III.4. Espèce : Mussaenda erectiloba Wernham
III.4.1. Description botanique de l’espèce
III.4.2. Distribution dans le monde
III.4.3. Ecologie
III.4.4. Utilisations et noms vernaculaires
DEUXIEME PARTIE : MATERIELS ET METHODES
CHAPITRE I : ETUDE CHIMIQUE DE Mussaenda erectiloba 
I.1. Matériel végétal
I.2. Collecte et préparation du matériel végétal
I.3. Criblage phytochimique
I.4. Méthodes d’extraction
I.4.1. Macération
I.4.2. Extraction par partage liquide-liquide
I.5. Fractionnement et isolement
I.5.1. Chromatographie sur couche mince
I.5.2. Chromatographie sur colonne ouverte
I.5.3. Fractionnement et isolement des constituants chimiques de l’extrait acétate d’éthyle
I.6. Résonance Magnétique Nucléaire .
I.6. 1. Spectre RMN du proton monodimensionnelle « classique »
I.6. 2. Spectre RMN du carbone « Broadband decoupling »
I.6. 3. Spectre DEPT 135 (Distortionless Enhancement by Polarization Transfer)
I.6. 4. Spectre COSY (COrrelation SpectroscopY)
I.6. 5. Spectre HSQC (Heteronuclear Single Quantum Correlation)
I.6. 6. Spectre HMBC (Heteronuclear Multiple Bond Correlation)
CHAPITRE II : ETUDE BIOLOGIQUE DE Mussaenda erectiloba 
II.1. Etude de l’activité antiplasmodiale in vitro de Mussaenda erectiloba
II.2. Etude de l’activité antioxydante de Mussaenda erectiloba
II.2.1. Méthode qualitative : Méthode bioautographie
II.2.2. Méthode quantitative : Méthode de DPPH par dosage mesuré au spectrophotomètre UV/visible
TROISIEME PARTIE : RESULTATS –DISCUSSIONS 
CHAPITRE I : ETUDE CHIMIQUE
I.1. Criblage phytochimique
I.2. Rendements des extractions
I.2.1. Rendement de l’extraction par macération
I.2.2. Rendements des extractions par partage liquide-liquide
I.3. Fractionnement de l’extrait AcOEt
I.4. Isolement des molécules contenues dans les fractions F1 et F2 actives selon le test antioxydant
I.5. Identification de D6
I.5.1. Analyse du spectre RMN 1H-1D « classique » du composé D6
I.5.2. Analyse du spectre RMN 13C « Broadband decoupling » et du spectre DEPT du composé D6
I.5.3. Analyse du spectre HSQC du composé D6
I.5.4. Analyse du spectre HMBC du composé D6
I.5.5. Analyse du spectre COSY du composé D6
CHAPITRE II: DISCUSSION DE L’ETUDE CHIMIQUE
CHAPITRE III : ETUDE BIOLOGIQUE
III.1. Tests antipaludiques sur les extraits de Mussaenda erectiloba
III.2. Analyse qualitative de l’activité antioxydante des extraits et des fractions de Mussaenda erectiloba
III.2.1. Analyse qualitative des extraits
III.2.2. Analyse qualitative des fractions de l’extrait acétate d’éthyle
III.3. Analyse quantitative de l’activité antioxydante de l’extrait AcOEt et des fractions F1 et F2
CHAPITRE IV : DISCUSSION DE L’ETUDE BIOLOGIQUE
CONCLUSION
Références
Webographie 
Annexe I : Criblage phytochimique 
Annexe II : Préparation des réactifs 
Annexe III : Préparation des étalons de l’α-tocophérol

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